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益母草(Leonurus japonicus Houtt.)作为传统中药,以往主要用于治疗妇产科疾病。近年来的研究发现,益母草中的主要化学成分为生物碱、类黄酮和二萜等[1],其中,益母草碱(4-胍基-正丁基-丁香酸酯,又名SCM-198)是一种具有抗血小板聚集[2]、改善微循环、保护心肌[3-4]等多种生物活性的重要生物碱,有广泛的临床应用前景[5-7]。本研究采用SD大鼠胚胎-胎仔发育毒性试验方法对益母草碱的致畸性进行评价;同时采用Ames试验、体外CHO细胞染色体畸变试验和小鼠骨髓嗜多染红细胞微核试验这3个标准试验组合的方法,分别从体外到体内,从微生物、离体真核细胞到整体动物水平系统检测其致突变性[8-9],旨在为临床安全用药提供参考。
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益母草碱(含量99.09%,复旦大学药学院,批号:20110329)。使用前以0.5% CMC-Na溶液配制成混悬液,供试;羧甲基纤维素钠(CMC-Na,批号:F20100420,国药集团化学试剂有限公司);DMSO(批号:T20101110,国药集团化学试剂有限公司);丝裂霉素C(批号:101202,浙江海正药业股份有限公司);环磷酰胺( 批号:10110621,江苏恒瑞药业股份有限公司);敌克松(批号:PS-262)、甲基磺酸甲酯(批号:129925)、4-硝基喹啉-N-氧化物(批号:N8141)、2-氨基芴(批号:A5550-0)、1,8-二羟基蒽醌(批号:S52075-139)均购自Sigma公司;大鼠肝微粒体酶S9(批号:2715,美国Moltox公司);组氨酸缺陷型鼠伤寒沙门菌共5支,分别为TA97、TA98、TA100、TA102和TA1535菌株,由国家上海新药安全性评价中心赠予,储存于液氮中。中国仓鼠卵巢(CHO)细胞由复旦大学公共卫生学院毒理教研室赠予,储存于液氮中。
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SD大鼠(SPF级),雌性100只,雄性80只。雌鼠5~6周龄,体重110~140 g;雄鼠6~7周龄,体重150~180 g(上海西普尔-必凯实验动物有限公司);实验动物质量合格证号:2008001629237。ICR小鼠(SPF级),共46只,雌雄各半。雌鼠7~8周龄,体重21~23 g;雄鼠7~8周龄,体重23~25 g(上海西普尔-必凯实验动物有限公司);实验动物质量合格证号:2008001610906。实验动物生产许可证号:SCXK(沪)2008-0016,实验动物使用许可证号:SYXK(沪)2007-0003。
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按《药物生殖毒性研究技术指导原则》[10-11]的要求,将雌鼠与雄鼠1:1合笼,交配第2天起对雌鼠进行阴道涂片检查,若显微镜下查见精子则视为交配成功,成功当天即为妊娠GD0。然后将这部分雌鼠按体重随机分为4组,每组20只。急性毒性试验结果提示SD大鼠经口灌胃给予益母草碱,最大耐受量(MTD)>5 000 mg/kg,因此,本试验设高、中、低剂量组(2 000、1 000和500 mg/kg体重),另设溶媒对照组,分别对不同组别的雌鼠连续灌胃给药10 d(给药起止时间为GD6~GD15)。于GD0、GD5、GD6~GD15和GD20 时称取孕鼠的体重。在GD20时处死孕鼠,观察外观是否异常,同时记录其活胎数(区分雌雄)、黄体数、着床数、死胎数等。所有的胎鼠,取其中约一半数量固定于Bouin液中作内脏检查,另一半固定于75%乙醇中制作骨骼标本,用于骨骼畸形检查。
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按《药物遗传毒性研究技术指导原则》[12-13]的要求,分别应用反映基因突变的Ames试验[14]、反映染色体畸变的染色体畸变试验(体外培养CHO细胞)[15]和小鼠微核试验(体内)[16]方法。
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应用TA97、TA98、TA100、TA102和TA1535这5支菌株,设5个剂量组(5 000、500、50、5、0.5 μg/皿),此外还设空白对照、溶媒对照和阳性对照组,每个剂量组及对照组均设3个平行皿(具体剂量见表1)。采用标准平板掺入法,使细菌在有或无代谢活化系统S9的条件下接触受试物,并用最低极限的琼脂培养基培养48~72 h后,先用显微镜观察平皿上的菌苔生长情况,确定受试物无明显的抑菌或杀菌作用,再人工计数每皿回复突变的菌落数,记录原始数据,并计算每组的均值和标准差,与溶媒对照组进行比较[8, 17-18]。重复试验一次。
表 1 阳性对照品的名称及剂量
菌株 无代谢活化系统(−S9) 有代谢活化系统(+S9) 阳性对照品名称 加入量
(μl/皿)配制浓度
(µg/ml)终浓度
(µg/皿)阳性对照品名称 加入量
(µl/皿)配制浓度
(µg/ml)终浓度
(µg/皿)TA97 敌克松 100 500.0 50.0 2-氨基芴 100 100.0 10.0 TA98 敌克松 100 500.0 50.0 2-氨基芴 100 100.0 10.0 TA100 甲基磺酸甲酯 100 10.0 1.0 2-氨基芴 100 100.0 10.0 TA102 甲基磺酸甲酯 100 10.0 1.0 1,8-二羟基蒽醌 100 500.0 50.0 TA1535 4-硝基喹啉-N-氧化物 100 5.0 0.5 环磷酰胺 100 500.0 50.0 -
在有或无代谢活化系统S9的条件下,在体外培养的CHO细胞中加入对应的不同浓度的受试物或对照品,反应体系总体积为10 ml。高、中、低剂量组受试物终浓度依次为1000、500和250 μg/ml,阳性对照组丝裂霉素C和环磷酰胺的终浓度分别为0.5、60 μg/ml,另设溶媒对照组分别作用于细胞4 h后换液,继续培养至24 h,最后收集细胞。用秋水仙碱处理所有细胞,将细胞终止在有丝分裂中期,经0.75%氯化钾低渗、1∶3醋酸甲醇固定、滴片和Giemsa染色后,在显微镜下计数和观察染色体的数量或结构是否改变[8, 17-18]。
观察对象的选择为染色体分散良好、数目完整的中期分裂相细胞,采用盲法读片,受试物及溶媒对照组每组观察200个细胞,阳性对照组观察100个细胞,计数染色体或染色单体的断裂、缺失及其他类型结构异常的数目[8, 17-18](裂隙和核内复制一般不作为畸变类型),计算畸变率。
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受试物采用经口灌胃的方式(与临床给药途径一致)给药,急性毒性试验结果提示ICR小鼠经口灌胃给予益母草碱,MTD>5 000 mg/kg,故高、中、低剂量分别设为2 000、1 000和500 mg/kg体重,同时设溶媒对照及阳性对照组。给药容积为10 ml/kg体重。以40 mg/kg体重的剂量腹腔注射给予环磷酰胺(阳性对照),给药容量为10 ml/kg体重。溶媒对照组以10 ml/kg体重的容积经口灌胃给予0.5% CMC-Na溶液。小鼠在给药24 h后处死,每只动物取其两侧股骨骨髓,制2张涂片,用甲醇固定,然后用pH6.8的Giemsa染液进行染色。
每只小鼠镜检1 000个骨髓嗜多染红细胞(PCE),计数含微核的PCE数(MNPCE),计算微核发生率,同时记录200个PCE计数过程中观察到的正染红细胞(NCE)的数目,并计算PCE/NCE值,以评价受试物是否有骨髓毒性[8, 17-18]。
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使用分析软件SPSS11.0,计量指标采用(
$ \bar x \pm {\rm{s}}$ )表示,各组之间的比较采用方差分析,率的比较采用χ2检验。 -
比较受试物各剂量组与溶剂对照组的回复突变菌落数,若某剂量组回复突变菌落数为溶剂对照组的2倍以上,呈现可重复性,并在一定的剂量范围内存在剂量-反应关系,则判断为阳性。
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染色体畸变细胞的发生率须与溶媒对照组进行比较分析后方可判定,>10%者判为阳性。
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采用χ2检验比较给药组与对照组之间的差异是否具有统计学意义。
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益母草碱各受试剂量作用下在给药期间(GD6~GD15)、停药后(GD15~GD20)以及整个孕期(GD0~GD20)孕鼠的增重与对照组相比,差异均无统计学意义;各受试剂量组子宫连胎重量、子宫重量、黄体数、着床率、每窝平均活胎数、死胎数和吸收胎数、活胎率、死胎发生率、吸收胎发生率与对照组相比,差异均无统计学意义;此外,各组胎鼠均未观察到内脏和外观畸形的发生。以上研究结果提示,益母草碱在各受试剂量下未观察到明显的母体毒性、胚胎毒性和致畸作用。
由表2可见,受试物各剂量组胎鼠的体重、身长、胎盘重量及性别比例与溶媒对照组相比无明显差异,提示益母草碱在各受试剂量下未观察到明显的胎儿毒性。
表 2 益母草碱对胎鼠生长发育的影响
观察指标 溶媒对照组 益母草碱组(mg/kg体重) 500 1000 2 000 受检胎鼠数(只) 184 174 160 168 性别比例(雄:雌) 93∶91 81∶93 80∶80 88∶80 活胎体重($ \bar x \pm {\rm{s}}$, g) 3.28±0.40 3.25±0.40 3.30±0.40 3.31±0.46 胎盘重($ \bar x \pm {\rm{s}}$, g) 0.56±0.08 0.55±0.09 0.56±0.08 0.55±0.09 活胎身长($ \bar x \pm {\rm{s}}$, cm) 3.60±0.18 3.57±0.20 3.57±0.21 3.61±0.22 由表3~5可见,受试物各剂量组胎鼠观察指标的数目及发育程度与溶媒对照组相比无明显差异,提示益母草碱在各受试剂量下对胎鼠骨骼的发育未见明显影响。
表 3 益母草碱对胎鼠骨骼发育的影响
观察指标 溶媒对照组 益母草碱组(mg/kg体重) 500 1000 2 000 受检胎鼠数(只) 88 85 77 78 颈椎数 7.0±0.0 7.0±0.0 7.0±0.0 7.0±0.0 胸椎数 13.0±0.0 13.0±0.0 13.0±0.0 13.0±0.0 腰椎数 6.0±0.0 6.0±0.0 6.0±0.0 6.0±0.0 尾椎 2.3±0.6 2.3±0.7 2.4±0.6 2.4±0.6 骶椎数 5.5±0.6 5.5±0.6 5.6±0.6 5.5±0.5 肋骨数 13.0±0.0 13.0±0.0 13.0±0.0 13.0±0.0 胸骨节数 4.7±1.1 4.6±1.1 5.0±1.2 4.7±1.0 掌骨数 7.3±1.0 7.3±1.0 7.5±0.9 7.0±1.0 近端指骨数 0.1±0.4 0.3±1.1 0.2±0.9 0.3±1.0 远端指骨数 9.9±0.4 10.0±0.2 9.9±0.4 10.0±0.2 跖骨数 8.0±0.2 8.0±0.2 7.9±0.4 8.0±0.0 近端跖骨数 0.0±0.0 0.0±0.0 0.0±0.0 0.0±0.0 远端跖骨数 10.0±0.3 10.0±0.2 9.9±0.4 10.0±0.0 表 4 益母草碱对胎鼠枕骨发育的影响
枕骨分级 溶媒对照组 益母草碱组(mg/kg体重) 500 1 000 2 000 受检胎鼠数(只) 88 85 77 78 Ⅰ级枕骨数[n (%)] 27(30.7) 25(29.4) 31(40.3) 29(37.2) Ⅱ级枕骨数[n (%)] 60(68.2) 59(69.4) 45(58.4) 49(62.8) Ⅲ级枕骨数[n (%)] 1(1.1) 1(1.2) 1(1.3) 0(0) Ⅳ级枕骨数[n (%)] 0(0) 0(0) 0(0) 0(0) 表 5 益母草碱对胎鼠胸骨节骨骼发育的影响
观察指标 溶媒对照组 益母草碱组(mg/kg体重) 500 1 000 2 000 受检胎鼠数(只) 88 85 77 78 胸骨节数 4.7±1.1 4.6±1.1 5.0±1.2 4.7±1.0 骨化不全数 0.7±0.8 0.5±0.6 0.7±0.7 0.8±0.7 未骨化数 1.4±1.1 1.4±1.1 1.0±1.2 1.3±1.0 -
受试物各剂量组和对照组的平皿通过肉眼观察均未见污染,并且在显微镜下可见背景菌苔生长。试验结果见表6、表7,5个菌株的自发回复突变菌落数以及阳性对照品诱发的回复突变菌落数均在历史对照范围内,并且各菌株阳性对照组的回复突变菌落数与空白对照组相比显著增加,提示本试验系统符合试验要求。在最高剂量已达到5 000 μg/皿的受试条件下,未观察到受试物的抑菌现象[8, 17-19]。各剂量组受试物在有或无代谢活化系统S9的条件下,对5支菌株所诱发的回复突变菌落数均与溶媒对照组的突变菌落数相近,并且未观察到明显的剂量-反应关系(表8)。
表 6 益母草碱对5支菌株的回变菌落数试验结果(个/皿,
$ \bar x \pm {\rm{s}}$ )(第1次)组别(μg/皿) TA97 TA98 TA100 TA102 TA1535 +S9 −S9 +S9 −S9 +S9 −S9 +S9 −S9 +S9 −S9 5 000 84±5 70±3 50±3 53±7 86±8 74±3 203±42 193±62 11±4 12±5 500 85±10 79±8 32±9 44±5 91±18 77±13 213±80 174±11 9±3 8±2 50 76±8 71±6 37±5 40±10 72±3 82±15 196±24 184±13 9±1 9±3 5 92±12 81±1 33±4 34±7 87±18 69±13 218±50 176±8 9±2 9±2 0.5 86±25 71±8 37±6 38±9 82±8 80±9 176±48 159±16 10±4 8±2 空白对照组 77±5 75±6 35±12 42±11 90±14 77±13 207±50 194±25 12±7 10±3 溶媒对照组 75±13 77±6 40±14 52±4 90±9 88±11 178±62 172±40 13±3 13±1 阳性对照组 745±49 1 067±176 467±115 711±87 578±61 486±34 636±41 634±32 467±82 433±15 表 7 益母草碱对5支菌株的回变菌落数(个/皿,
$ \bar x \pm {\rm{s}}$ )(第2次)组别(μg/皿) TA97 TA98 TA100 TA102 TA1535 +S9 −S9 +S9 −S9 +S9 −S9 +S9 −S9 +S9 −S9 5 000 83±7 80±9 32±4 33±8 94±16 93±7 211±13 196±18 9±2 9±6 500 79±11 79±10 26±4 30±6 78±5 79±7 208±6 195±7 9±1 10±3 50 74±13 74±11 32±4 31±3 95±27 86±8 187±9 195±42 8±2 11±2 5 86±6 79±16 31±4 35±5 83±10 85±14 179±4 177±62 9±1 7±2 0.5 84±9 85±7 26±6 27±2 110±20 91±11 190±1 186±18 8±2 12±5 空白对照组 76±5 80±14 32±6 30±11 88±2 102±10 212±6 176±46 10±2 8±1 溶媒对照组 83±3 79±12 29±3 37±11 84±2 89±9 192±15 184±33 8±2 10±2 阳性对照组 807±5 806±90 934±64 851±163 446±40 496±21 623±23 621±37 480±35 476±53 表 8 益母草碱对24 h体外培养CHO细胞的染色体畸变试验结果(加或不加S9系统)
组别(μg/ml) 观察细胞数
(个)各类染色体畸变数 畸变细胞数
(个)畸变率
(%)断裂 断片 双着
丝粒三辐体 四辐体 碎片或微小体 环状 多倍体 250 +S9 200 2 0 0 0 0 0 0 0 2 1.0 −S9 200 2 0 0 0 0 0 0 0 2 1.0 500 +S9 200 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0.5 −S9 200 8 0 0 0 0 0 0 0 3 1.5 1 000 +S9 200 5 0 1 0 0 0 0 0 3 1.5 −S9 200 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0.5 溶媒对照组 +S9 200 2 0 1 0 0 0 0 0 3 1.5 溶媒对照组 −S9 200 2 0 0 0 0 0 0 0 2 1.0 阳性对照组 +S9 100 20 0 0 2 0 0 0 0 17 17* 阳性对照组 −S9 100 18 3 0 0 1 0 0 0 18 18* *P<0.05,与溶媒对照组比较。 -
阳性对照组能够诱发受试细胞染色体的畸变率明显增高,24 h在有或无代谢活化系统S9的情况下,染色体畸变率分别为17%和18%,均>10%,为阳性结果;溶媒对照品以及250、500和1 000 μg/ml受试物在24 h、有S9组的染色体畸变率分别为1.5%、1.0%、0.5%和1.5%;24 h、无S9组的染色体畸变率分别为1.0%、1.0%、1.5%和0.5%,综上,溶媒对照组及受试物各剂量组细胞染色体畸变率均小于5%,为阴性结果[8, 17-18]。
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各剂量组小鼠在给药后均未见异常。微核试验阅片结果见表9。益母草碱在各受试剂量下未观察到对小鼠骨髓的抑制作用,溶媒对照组雌性和雄性小鼠骨髓的PCE微核发生率分别为4.09‰和2.94‰,阳性对照组雌性和雄性小鼠骨髓PCE微核发生率分别为15.93‰和16.28‰,与溶媒对照组相比,差异均有统计学意义,受试物在500、1 000、2 000 mg/kg剂量下对雌性ICR小鼠骨髓PCE微核诱发率分别为2.53‰、2.16‰和2.17‰,对雄性ICR小鼠骨髓PCE微核诱发率分别为0.78‰、0.79‰和2.96‰,由上述结果可见,受试物各剂量组均未诱发ICR小鼠骨髓PCE微核率的明显增高[8, 17-18, 20]。
表 9 益母草碱对小鼠骨髓嗜多染红细胞的微核效应试验结果
组别(mg/kg体重) 性别 动物数(只) 观察PCE数(个) PCE/NCE($\bar x $±s) 微核率($\bar x $±s,‰) 500 雌 5 5 126 1.17±0.17 2.53±1.48 雄 5 5 109 1.14±0.24 0.78±0.81* 1 000 雌 5 5 076 1.19±0.21 2.16±1.28 雄 5 5 093 1.42±0.14 0.79±1.30* 2 000 雌 5 5 117 1.15±0.11 2.17±1.47 雄 5 5 088 1.15±0.20 2.96±2.43 溶媒对照组 雌 5 5 131 1.07±0.03 4.09±1.88 雄 5 5 109 1.15±0.11 2.94±0.98 阳性对照组 雌 5 5 019 1.25±0.09 15.93±7.50* 雄 5 5 039 1.27±0.16 16.28±3.80* *P<0.05,与溶媒对照组比较。 -
益母草作为传统中药,其应用广泛且历史悠久,主要用于治疗月经不调、痛经、恶露等妇科疾病,同时还用于消肿化瘀、排水利尿。而现代医学已证明益母草中的生物碱——益母草碱在其中发挥了主要功效,益母草碱具有溶栓、抗凝、降低血脂和血液黏度、抑制红细胞和血小板聚集[2]等多种功能,对改善微循环、抗自由基活性和减少细胞内钙超载[3-4]也有显著作用。上述功能有助于预防心血管疾病和脑血管疾病,抑制心肌纤维化[7]、改善认知、促进神经元修复[21]、抗炎[22]、防治糖尿病[23]等,因此,益母草碱在心脑血管、代谢病、肾病、生殖[24]等临床研究领域有相当广泛的应用前景[5-7]。进行安全性评价是药物研发和安全使用的重要环节,但目前对益母草碱的基础毒性和特殊毒性的研究尚未见相关文献报道。研究其遗传毒性和生殖毒性对于临床安全用药具有重要的指导意义。
本研究采用国际通用的研究方法,对益母草碱的生殖毒性和遗传毒性进行了系统的评价。在胚胎-胎仔发育毒性研究中,自大鼠胚胎着床至硬腭闭合这个阶段孕鼠口服益母草碱,通过观察受试物对妊娠动物、胚胎及胎仔发育的影响检测其致畸性。药物遗传毒性的研究根据国家相关标准,必须遵循原核生物与真核生物、体内系统与体外系统相结合的原则进行,本研究采用Ames试验、体外CHO细胞染色体畸变试验和小鼠骨髓嗜多染红细胞微核试验三者标准组合方案,其检测范围涵盖了基因突变、染色体结构和数目畸变等多个遗传学终点。Ames试验用于检测DNA损伤引起的基因突变,组氨酸营养缺陷型(his-)鼠伤寒沙门菌在受到诱变剂作用后会发生大量回复突变,可自行合成组氨酸,形成肉眼可见的菌落。某些化学物质需经代谢活化后才具有致突变作用,因此,在测试系统中又设置了平行组加入哺乳动物微粒体酶,以弥补体外试验缺乏代谢活化系统的不足。染色体畸变试验常用于检测化合物是否引起细胞染色体结构和数目的改变。诱变因素在损伤染色体的同时也可能损伤纺锤体,从而导致染色体的丢失并形成微核,应用微核试验检测染色体或有丝分裂器的损伤,具有直观、简便等优势[9]。
研究结果显示,在本试验剂量条件下,益母草碱未观察到明显的胚胎-胎仔发育毒性以及遗传毒性,该结论可为益母草碱在临床上的安全使用提供参考和指导,有助于降低用药风险。
Evaluation for embryo-fetal developmental toxicity and genetic toxicity of leonurine
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摘要:
目的 检测益母草碱的发育毒性和遗传毒性。 方法 在SD孕鼠妊娠第6~15天经口灌胃给予500、1 000和2 000 mg/kg体重的益母草碱,同时设溶媒对照组,经口灌胃0.5% CMC-Na溶液。妊娠第20天剖杀孕鼠,分析其生殖毒性。分别采用反映基因突变的鼠伤寒沙门菌回复突变试验(Ames试验)、反映染色体畸变的细胞染色体畸变试验(体外培养CHO)和ICR小鼠骨髓微核试验(体内)检测益母草碱的遗传毒性。 结果 在500、1 000和2 000 mg/kg剂量益母草碱的作用下孕鼠的增重与对照组相比,差异均无统计学意义;各受试剂量组孕鼠各项指标与对照组相比,差异均无统计学意义;各剂量组胎鼠各类指标与溶媒对照组相比,无明显差异。Ames试验结果提示:在0.5、5、50、500、5 000 μg/皿受试剂量下,在有或无代谢活化S9系统时,与溶媒对照组相比,受试物对组氨酸缺陷型鼠伤寒沙门菌(TA97、TA98、TA100、TA102及TA1535)所诱发的回复突变菌落数均相近。染色体畸变试验结果显示:250、500和1 000 μg/ml 3个剂量的受试物,对有或无代谢活化系统S9培养的CHO细胞的染色体畸变率无明显影响。微核试验显示100、500和2 000 mg/kg各个剂量组对ICR小鼠的微核诱发率与溶媒对照组比较均无显著差异(P>0.05)。 结论 益母草碱在500、1 000和2 000 mg/kg剂量下未观察到明显的母体毒性、胚胎毒性、胎儿毒性和致畸作用。益母草碱对鼠伤寒沙门菌无致突变性,对哺乳动物培养细胞的染色体无致畸变作用,对ICR小鼠无诱发骨髓嗜多染红细胞微核的效应。上述结果表明在本试验条件下,益母草碱无发育和遗传毒性。 Abstract:Objective To evaluate the developmental toxicity and genotoxicity of leonurine. Methods Leonurine was given orally to SD pregnant rats on the 6th to 15th day of pregnancy at the dose of 500, 1 000 and 2 000 mg/kg body weight. The control group received 0.5% CMC-Na solution orally. Pregnant rats were sacrificed on the 20th day of pregnancy to analyze the reproductive toxicity. Ames test, in vitro chromosomal aberration test of CHO cell and in vivo micronucleus assay were performed to investigate the genotoxicity of leonurine. Results There was no difference statistically in weight gain of pregnant mice between two groups at the dose of 500, 1 000 and 2 000 mg/kg of motherwort alkaloids. In vitro CHO cell chromosomal aberration test indicated that there was no statistical difference between leonurine groups (doses of 250, 500 and 1 000 μg/ml) and the solvent control group with and without metabolic activation system S9. The number of micronuclei in ICR mice did not increase (P>0.05) in the mouse bone marrow micronucleus test at the doses of 100, 500 and 2 000 mg/kg. Conclusion No significant maternal toxicity, embryo toxicity, fetal toxicity and teratogenic effects were observed with leonurine at 500, 1 000 and 2 000 mg/kg doses. Leonurine was not genotoxic in Salmonella typhimurium reverse mutation test, in vitro CHO cells chromosome aberration test or mouse bone marrow micronucleus test. It showed that leonurine had no developmental toxicity and genotoxicity under the conditions of the experiment. -
Key words:
- leonurine /
- developmental toxicity /
- genotoxicity
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近年来由于糖尿病肾病、高血压肾病和癌症发病率的增加,肿瘤科医生会面对同时患有癌症和肾衰竭的患者[1]。乳腺癌是女性常见的恶性肿瘤,而化疗是目前乳腺癌治疗的主要方法之一。紫杉类药物多西他赛是乳腺癌化疗中的主要细胞毒性药物,它通过干扰细胞有丝分裂和有丝分裂间期所必需的微管网络发挥抗肿瘤作用[2]。而多西他赛的骨髓抑制、神经毒性等不良反应会影响其用量,甚至药物的选择。目前指南均推荐多西他赛按照体表面积进行给药[3],然而由于不同人群的基因多态性、生理状态、遗传特性,给予相同剂量的多西他赛仍会导致显著的药动学差异[4]。现临床上已广泛应用治疗药物血药浓度监测(TDM)来降低药物的个体差异[5]。已有大量研究表明[5–12],药时曲线下面积(AUC)为评价多西他赛体内暴露的药动学参数,并作为多西他赛剂量调整的依据。而在肾衰竭合并乳腺癌的患者中,多西他赛在剂量调整和透析对其的影响信息非常少[1,13],仍需开展进一步的研究。本研究旨在分析慢性肾衰竭对乳腺癌患者多西他赛的AUC及不良反应是否有影响,以便对此类患者的多西他赛给药剂量提供依据。
1. 资料及方法
1.1 一般资料
收集2019年1月至2021年11月我院收治的24例已行乳腺癌根治术的使用多柔比星注射液联合环磷酰胺4个周期序贯多西他赛4个周期(AC-T)辅助化疗的乳腺癌患者的临床资料及随访结果。本研究为单中心、回顾性、病例对照研究。根据患者的肾功能指标肌酐清除率(Ccr),研究分为慢性肾功能衰竭组和肾功能正常组:Ccr≤10 ml/min为慢性肾功能衰竭组,Ccr≥90 ml/min肾功能正常组。本研究经我院医学伦理委员会审核批准(KY2021-004-02)。
1.2 纳入及排除标准
病例纳入标准:(1)年龄18岁以上;(2)经组织病理学确诊为乳腺癌;(3)使用AC-T辅助化疗;(4)器官水平满足以下要求:白细胞计数≥3.0×109/L,中性粒细胞绝对计数≥1.5×109/L,血小板计数≥75×109/L,血红蛋白≥90 g/L,天冬氨酸氨基转移酶、丙氨酸氨基转移酶低于正常值上限的2.5倍,血清总胆红素低于正常值上限的1.5倍;(5)监测了多西他赛血药浓度。排除标准:肝、心功能和血常规异常。
1.3 治疗方法
多西他赛注射液(齐鲁制药有限公司,批号1E0074C49 国药准字H20031244,规格 0.5ml∶20mg×1支/盒),使用AC化疗4个周期后使用,21天一次,治疗过程中如果病人出现不良反应且无法耐受时,可将药物进行减量,下调20%~25%[14]。
1.4 收集指标
收集患者一般资料:性别、年龄、体重、体表面积;多西他赛使用剂量、多西他赛抽血时间点及血药浓度、化疗前患者肝功能相关指标:白蛋白、谷草转氨酶、谷丙转氨酶、总胆红素、直接胆红素;化疗前患者肾功能血清肌酐值、化疗前白细胞及中性粒细胞绝对值。采用CTCAE4.0评价标准进行不良反应评价,观察多西他赛化疗后出现的不良反应:恶心呕吐、骨髓抑制、便秘、肝功能损伤。
1.5 血药浓度监测及AUC
多西他赛血药浓度监测抽血时间点[8,15–19]:血样1:多西他赛滴注结束时;血样2:多西他赛滴注结束后30 min。从输液的对侧肢体通过外周静脉采集3 ml血液于EDTA紫色抽血管中。多西他赛血药浓度的监测方法由湖南德米特仪器有限公司提供,并采用湖南德米特仪器有限公司全自动二维液相色谱仪器进行分析[8,19-20]。采用Saladax公司提供的人群PK模型软件,根据多西他赛剂量、血样采集时间和多西他赛血药浓度计算AUC[16]。
1.6 统计学方法
采用风锐统计软件进行数据处理与分析[21]。正态分布计量资料以均数 ± 标准差(
$\bar x \pm \mathrm{s}$ )表示,采用t检验;计数资料以相对数构成比(%)或率(%)表示,采用χ2检验;不服从正态分布的计量资料以中位数(四分位数)[M (P25,P75)]表示,采用Mann-Whitney U检验。多西他赛AUC的影响因素采用单因素线性回归法进行分析,以P<0.05为差异具有统计学意义。2. 结果
2.1 两组患者一般临床特征
对2019年1月至2021年11月在我院进行了多西他赛血药浓度监测的乳腺癌患者进行筛选,24例患者纳入本研究,其中肾功能衰竭组5例,肾功能正常组19例,均为女性。患者年龄(54.7±9.3)岁,体表面积[1.6(1.5, 1.6)] m2,体重(51.5±5.1)kg,给药剂量[73.6(72.3,80.0)] mg/m2。患者体表面积、给药剂量、体重无统计学差异。两组患者在使用多西他赛化疗前肝功能相关指标及血象白细胞、中性粒细胞均在正常范围内(见表1)。
表 1 两组患者临床特征描述临床特点 总人数(n=24) 肾功能衰竭组(n=5) 肾功能正常组(n=19) P 检验值 年龄(岁) 54.7±9.3 59.2±6.1 53.5±9.8 0.23 1.53 体表面积(m2) 1.6 (1.5, 1.6) 1.4 (1.4, 1.5)▲ 1.6 (1.5, 1.6) 0.05 3.86 给药剂量(mg/m2) 73.6(72.3,80.0) 70.4 (69.4, 73.0) 74.4(72.3, 91.2) 0.08 3.06 体重(kg) 51.5±5.1 51.4±3.8 51.5±5.5 0.97 0.001 白蛋白(g/L) 42.4±3.8 39.0±4.9▲ 43.2±3.0 0.02 6.12 谷草转氨酶(U/L) 24.6 (19.9, 31.7) 19.3 (19.1, 20.6)▲ 29.0(24.1, 34.9) 0.01 6.02 谷丙转氨酶(U/L) 21.4(15.0, 34.1) 13.7(11.2, 14.8)▲▲ 24.0(20.4, 39.4) 0.002 10.01 总胆红素(μmol/L) 11.0±3.7 9.0±2.9 11.5±3.7 0.17 1.95 直接胆红素(μmol/L) 2.4±1.1 1.9±0.8 2.5±1.1 0.27 1.28 肌酐(μmol/L) 60.5 (52.0, 285.8) 908.0 (819.0, 1 018.0)▲▲ 54.8 (52.0, 65.0) < 0.001 11.42 肌酐清除率(ml/min) 69.3(17.9, 91.8) 4.9(4.3, 5.4)▲▲ 86.3(59.3, 92.5) < 0.001 11.4 化疗前白细胞(×109/L) 6.5±1.7 7.5±1.7 6.2±1.6 0.12 2.56 化疗前中性粒绝对值(×109/L) 4.0(3.0, 4.9) 4.1(4.0, 8.7) 3.9 (2.5, 4.8) 0.21 1.55 ▲P<0.05, ▲▲P<0.01,与肾功能正常组比较。 2.2 两组患者多西他赛血药浓度
表2中患者使用多西他赛的给药剂量73.6(72.3,80.0)mg/m2,两组间给药剂量无统计学意义。患者21天使用1次多西他赛,每次使用多西他赛剂量相同,因此每个患者4个多西他赛周期只需监测1次多西他赛血药浓度即可。其中两组多西他赛在2个时间点的血药浓度和多西他赛的AUC差异并无统计学意义。
表 2 24例患者使用多西他赛剂量和血药浓度及AUC情况指标 总人数(n=24) 肾功能衰竭组(n=5) 肾功能正常组(n=19) P 检验值 多西他赛给药剂量(mg/m2) 73.6(72.3, 80.0) 70.4(69.4, 73.0) 74.4(72.3, 91.2) 0.08 3.06 多西他赛滴注结束时血药浓度(ng/ml) 682.4(460.2, 1 208.0) 650.0 (625.3, 750.0) 690.0(416.5, 1 239.0) 0.64 0.21 多西他赛滴注结束30min后血药浓度(ng/ml) 136.5±77.1 172.0±81.7 127.2±75.4 0.26 1.36 多西他赛AUC值(mg·h/L) 1.8±0.7 1.6±0.6 1.8±0.8 0.60 0.29 2.3 多西他赛AUC的影响因素分析
线性单因素回归分析显示,多西他赛滴注结束时血药浓度与多西他赛的AUC有显著相关性(P<0.001)。而患者年龄、给药剂量、肝功能、肾功能、化疗前白细胞及中性粒细胞绝对值均与多西他赛AUC的水平没有相关性(P>0.05)(表3)。此分析结果说明患者肾功能衰竭并不影响多西他赛AUC水平。
表 3 多西他赛 AUC 影响因素的单因素线性回归分析因素 β 95%CI P(t检验) 年龄(岁) −0.01 −0.04~0.03 0.59 体表面积(m2) 1.09 −2.59~4.76 0.55 给药剂量(mg/m2) 0.01 −0.02~0.05 0.45 多西他赛滴注结束时血药浓度(ng/ml) 0.07▲▲ 0.04~0.09 < 0.001 多西他赛滴注结束30min后血药浓度(ng/ml) 0.34 −0.06~0.75 0.09 白蛋白(g/L) 0.05 −0.04~0.13 0.27 谷草转氨酶(U/L) −0.27 −2.72~2.17 0.82 谷丙转氨酶(U/L) −0.01 −0.02~0.01 0.46 总胆红素(μmol/L) −0.07 −0.15~0.02 0.12 直接胆红素(μmol/L) −0.23 −0.52~0.06 0.12 肌酐(μmol/L) −0.02 −0.12~0.07 0.61 体重(kg) 0.02 −0.05~0.08 0.63 肌酐清除率(ml/min) 0.14 −0.76~1.05 0.74 化疗前白细胞(×109/L) 0.02 −0.17~0.22 0.82 化疗前中性粒细胞(×109/L) 0.41 −8.34~19.15 0.97 ▲▲P<0.01,与肾功能正常组比较。 2.4 两组患者多西他赛不良反应
观察两组患者使用多西他赛后不良反应:恶心呕吐、骨髓抑制、便秘及肝功能损伤的发生率,两组间各类不良反应发生率差异无统计学意义(P>0.05),且两组患者均未出现肝功能损伤(见表4)。
表 4 两组患者使用多西他赛后不良反应发生情况不良反应 总人群 肾功能衰竭组(n=5) 肾功能正常组(n=19) P 检验值 恶心呕吐,n (%) 0.63 Fisher I 13 (54.2) 2 (40) 11 (57.9) II 11 (45.8) 3 (60) 8 (42.1) 骨髓抑制, n (%) 0.22 Fisher I 19 (79.2) 3 (60) 16 (84.2) II 4 (16.7) 1 (20) 3 (15.8) III 1 ( 4.2) 1 (20) 0 (0) 便秘, n (%) 1 Fisher I 24 (100.0) 5 (100) 19 (100) 3. 讨论
多西他赛的药动学符合三房室模型[22],α半衰期为4.5 min,β半衰期为38.3 min,γ半衰期为12.2 h。它具有线性药动学特征,其峰值水平随着给药剂量和给药程序的不同而不同[23-24],AUC与给药剂量成比例增加。多西他赛主要经肝脏P450 CYP3A4系统代谢,经胆汁排泄到粪便,肾脏排泄量较小[25]。虽然多西他赛在肾脏排泄量小,但肾功能不全仍可能影响药物在体内的累积,增加药物暴露,从而导致不良反应增加。目前在进行透析的肾衰竭患者中,多西他赛说明书和指南并没有相关的剂量推荐。
本研究为单中心、回顾性病例对照研究,根据患者肾功能的状态,将患者分为肾功能衰竭组和肾功能正常组进行对比研究。可观察到:(1)两组患者化疗前临床基线特征:肝功能、血常规、体表面积及给药剂量无明显差异。(2)两组患者使用多西他赛后体内暴露量AUC并无明显差异,对多西他赛AUC影响因素进行单因素线性回归分析发现患者肾功能状态肌酐清除率并不影响其多西他赛的AUC水平。(3)对两组患者的不良反应进行随访,其血液学毒性、消化道毒性、肝毒性也无明显差异。因此本研究证实了在慢性肾功能衰竭的患者中多西他赛的暴露量及不良反应与肾功能正常的患者并无明显差异。对于慢性肾衰竭患者给予多西他赛进行化疗时,剂量可按照肾功能正常的患者进行给药。本研究对于慢性肾功能衰竭而同时患有癌症需使用化疗药物多西他赛的患者的剂量指导具有重要的临床意义。
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表 1 阳性对照品的名称及剂量
菌株 无代谢活化系统(−S9) 有代谢活化系统(+S9) 阳性对照品名称 加入量
(μl/皿)配制浓度
(µg/ml)终浓度
(µg/皿)阳性对照品名称 加入量
(µl/皿)配制浓度
(µg/ml)终浓度
(µg/皿)TA97 敌克松 100 500.0 50.0 2-氨基芴 100 100.0 10.0 TA98 敌克松 100 500.0 50.0 2-氨基芴 100 100.0 10.0 TA100 甲基磺酸甲酯 100 10.0 1.0 2-氨基芴 100 100.0 10.0 TA102 甲基磺酸甲酯 100 10.0 1.0 1,8-二羟基蒽醌 100 500.0 50.0 TA1535 4-硝基喹啉-N-氧化物 100 5.0 0.5 环磷酰胺 100 500.0 50.0 表 2 益母草碱对胎鼠生长发育的影响
观察指标 溶媒对照组 益母草碱组(mg/kg体重) 500 1000 2 000 受检胎鼠数(只) 184 174 160 168 性别比例(雄:雌) 93∶91 81∶93 80∶80 88∶80 活胎体重( $ \bar x \pm {\rm{s}}$ , g)3.28±0.40 3.25±0.40 3.30±0.40 3.31±0.46 胎盘重( $ \bar x \pm {\rm{s}}$ , g)0.56±0.08 0.55±0.09 0.56±0.08 0.55±0.09 活胎身长( $ \bar x \pm {\rm{s}}$ , cm)3.60±0.18 3.57±0.20 3.57±0.21 3.61±0.22 表 3 益母草碱对胎鼠骨骼发育的影响
观察指标 溶媒对照组 益母草碱组(mg/kg体重) 500 1000 2 000 受检胎鼠数(只) 88 85 77 78 颈椎数 7.0±0.0 7.0±0.0 7.0±0.0 7.0±0.0 胸椎数 13.0±0.0 13.0±0.0 13.0±0.0 13.0±0.0 腰椎数 6.0±0.0 6.0±0.0 6.0±0.0 6.0±0.0 尾椎 2.3±0.6 2.3±0.7 2.4±0.6 2.4±0.6 骶椎数 5.5±0.6 5.5±0.6 5.6±0.6 5.5±0.5 肋骨数 13.0±0.0 13.0±0.0 13.0±0.0 13.0±0.0 胸骨节数 4.7±1.1 4.6±1.1 5.0±1.2 4.7±1.0 掌骨数 7.3±1.0 7.3±1.0 7.5±0.9 7.0±1.0 近端指骨数 0.1±0.4 0.3±1.1 0.2±0.9 0.3±1.0 远端指骨数 9.9±0.4 10.0±0.2 9.9±0.4 10.0±0.2 跖骨数 8.0±0.2 8.0±0.2 7.9±0.4 8.0±0.0 近端跖骨数 0.0±0.0 0.0±0.0 0.0±0.0 0.0±0.0 远端跖骨数 10.0±0.3 10.0±0.2 9.9±0.4 10.0±0.0 表 4 益母草碱对胎鼠枕骨发育的影响
枕骨分级 溶媒对照组 益母草碱组(mg/kg体重) 500 1 000 2 000 受检胎鼠数(只) 88 85 77 78 Ⅰ级枕骨数[n (%)] 27(30.7) 25(29.4) 31(40.3) 29(37.2) Ⅱ级枕骨数[n (%)] 60(68.2) 59(69.4) 45(58.4) 49(62.8) Ⅲ级枕骨数[n (%)] 1(1.1) 1(1.2) 1(1.3) 0(0) Ⅳ级枕骨数[n (%)] 0(0) 0(0) 0(0) 0(0) 表 5 益母草碱对胎鼠胸骨节骨骼发育的影响
观察指标 溶媒对照组 益母草碱组(mg/kg体重) 500 1 000 2 000 受检胎鼠数(只) 88 85 77 78 胸骨节数 4.7±1.1 4.6±1.1 5.0±1.2 4.7±1.0 骨化不全数 0.7±0.8 0.5±0.6 0.7±0.7 0.8±0.7 未骨化数 1.4±1.1 1.4±1.1 1.0±1.2 1.3±1.0 表 6 益母草碱对5支菌株的回变菌落数试验结果(个/皿,
$ \bar x \pm {\rm{s}}$ )(第1次)组别(μg/皿) TA97 TA98 TA100 TA102 TA1535 +S9 −S9 +S9 −S9 +S9 −S9 +S9 −S9 +S9 −S9 5 000 84±5 70±3 50±3 53±7 86±8 74±3 203±42 193±62 11±4 12±5 500 85±10 79±8 32±9 44±5 91±18 77±13 213±80 174±11 9±3 8±2 50 76±8 71±6 37±5 40±10 72±3 82±15 196±24 184±13 9±1 9±3 5 92±12 81±1 33±4 34±7 87±18 69±13 218±50 176±8 9±2 9±2 0.5 86±25 71±8 37±6 38±9 82±8 80±9 176±48 159±16 10±4 8±2 空白对照组 77±5 75±6 35±12 42±11 90±14 77±13 207±50 194±25 12±7 10±3 溶媒对照组 75±13 77±6 40±14 52±4 90±9 88±11 178±62 172±40 13±3 13±1 阳性对照组 745±49 1 067±176 467±115 711±87 578±61 486±34 636±41 634±32 467±82 433±15 表 7 益母草碱对5支菌株的回变菌落数(个/皿,
$ \bar x \pm {\rm{s}}$ )(第2次)组别(μg/皿) TA97 TA98 TA100 TA102 TA1535 +S9 −S9 +S9 −S9 +S9 −S9 +S9 −S9 +S9 −S9 5 000 83±7 80±9 32±4 33±8 94±16 93±7 211±13 196±18 9±2 9±6 500 79±11 79±10 26±4 30±6 78±5 79±7 208±6 195±7 9±1 10±3 50 74±13 74±11 32±4 31±3 95±27 86±8 187±9 195±42 8±2 11±2 5 86±6 79±16 31±4 35±5 83±10 85±14 179±4 177±62 9±1 7±2 0.5 84±9 85±7 26±6 27±2 110±20 91±11 190±1 186±18 8±2 12±5 空白对照组 76±5 80±14 32±6 30±11 88±2 102±10 212±6 176±46 10±2 8±1 溶媒对照组 83±3 79±12 29±3 37±11 84±2 89±9 192±15 184±33 8±2 10±2 阳性对照组 807±5 806±90 934±64 851±163 446±40 496±21 623±23 621±37 480±35 476±53 表 8 益母草碱对24 h体外培养CHO细胞的染色体畸变试验结果(加或不加S9系统)
组别(μg/ml) 观察细胞数
(个)各类染色体畸变数 畸变细胞数
(个)畸变率
(%)断裂 断片 双着
丝粒三辐体 四辐体 碎片或微小体 环状 多倍体 250 +S9 200 2 0 0 0 0 0 0 0 2 1.0 −S9 200 2 0 0 0 0 0 0 0 2 1.0 500 +S9 200 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0.5 −S9 200 8 0 0 0 0 0 0 0 3 1.5 1 000 +S9 200 5 0 1 0 0 0 0 0 3 1.5 −S9 200 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0.5 溶媒对照组 +S9 200 2 0 1 0 0 0 0 0 3 1.5 溶媒对照组 −S9 200 2 0 0 0 0 0 0 0 2 1.0 阳性对照组 +S9 100 20 0 0 2 0 0 0 0 17 17* 阳性对照组 −S9 100 18 3 0 0 1 0 0 0 18 18* *P<0.05,与溶媒对照组比较。 表 9 益母草碱对小鼠骨髓嗜多染红细胞的微核效应试验结果
组别(mg/kg体重) 性别 动物数(只) 观察PCE数(个) PCE/NCE( $\bar x $ ±s)微核率( $\bar x $ ±s,‰)500 雌 5 5 126 1.17±0.17 2.53±1.48 雄 5 5 109 1.14±0.24 0.78±0.81* 1 000 雌 5 5 076 1.19±0.21 2.16±1.28 雄 5 5 093 1.42±0.14 0.79±1.30* 2 000 雌 5 5 117 1.15±0.11 2.17±1.47 雄 5 5 088 1.15±0.20 2.96±2.43 溶媒对照组 雌 5 5 131 1.07±0.03 4.09±1.88 雄 5 5 109 1.15±0.11 2.94±0.98 阳性对照组 雌 5 5 019 1.25±0.09 15.93±7.50* 雄 5 5 039 1.27±0.16 16.28±3.80* *P<0.05,与溶媒对照组比较。 -
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